Бактериология раневого процесса. Бактериальный посев из раны

Обновлено: 08.06.2024

7 рабочих дней. Выполнение ограничено для некоторых регионов. Просьба уточнять у курирующего менеджера* указанный срок не включает день взятия биоматериала
*при отсуствии роста результат может быть выдан до 3 суток

Аспират лимфоузла, эндоскопические выщипы, содержимое гигромы/серомы, слизистая оболочка мочевого пузыря, биоптат кожи, раневое отделяемое при оперативном вмешательстве, контроль микрофлоры при установке металлоконструкции, центральный венозный катетер, раневое отделяемое с кожи

Посев раневого отделяемого/нестерильного биоматериала на микрофлору с определением чувствительности к антимикробным препаратам.

Исследование доступно в трех вариантах:

определение чувствительности к АМП (обычный спектр антибиотиков) определение чувствительности к АМП (дополнительный спектр антибиотиков) определение минимальной ингибирующей концентрации (МИК) антибиотика (при данном исследовании спектр антибиотиков изменяется)

Показания к исследованию:

Воспалительные заболевания кожи, рецидивирующие циститы, наличие/подозрение на воспалительный процесс внутренних органов.

Дополнительная информация:

Исследование проводят до начала приема системных и местных АМП. При подозрении на воспаление, вызванное анаэробными возбудителями (Clostridium perfringens, Peptostreptococcus spp.), дополнительно назначают исследование AN 452АНАЭ. При необходимости определения дрожжеподобных грибов и их чувствительности к антимикотическим препаратам, дополнительно назначают исследование AN 442РАН.

Исследуемый материал:

Раневое отделяемое с кожи, биоптат кожи, аспират лимфоузла, аспират слизистой оболочки мочевого пузыря, раневое отделяемое при оперативных вмешательствах, эндоскопические выщипы, отделяемое гигромы/серомы, мазок с поверхности кости при установке металлоконструкций, центральный венозный катетер (после извлечения из полости сосуда).

Транспортная среда:

Используется транспортная система Amies (Эймс), включающая флакон с оранжевой крышкой с жидкой транспортной средой и тампоном на аппликаторе.
Транспортная среда Amies (Эймс) позволяет сохранить биоматериал в неизмененном виде до 48 часов, при температуре хранения +20С…+80С. Выдается лабораторией VET UNION.

Порядок действий:

Все манипуляции проводятся с соблюдением правил асептики/антисептики для избегания контаминации пробы бактериями с кожного покрова.
Аспират лимфоузла: аспират, размером не более 0.1 см, поместить в жидкую среду Amies (Эймс) в количестве не более 3 штук.
Эндоскопический выщип: биоптат взятый на границе здоровой и пораженной ткани, размером не более 0.3 см, поместить в жидкую среду Amies (Эймс) в количестве не более 1 штуки.
Содержимое гигромы/серомы: перенести полученную жидкость в транспортную среду Amies (Эймс) в объеме не более 0.3 мл.
Слизистая оболочка мочевого пузыря: биоптат слизистой оболочки, взятой интраоперационно, размером не более 0.3 см, поместить в жидкую среду Amies (Эймс). Возможно взятие соскоба клеток со слизистой оболочки непосредственно тампоном на аппликаторе (ESwab) от транспортной системы Amies (Эймс) при цистотомии.
Раневое отделяемое при оперативном вмешательстве: при операциях на внутренних органах, позвоночнике, трубчатых костях порядок манипуляций: резецировать пораженный участок/провести биопсию. Опустить тампон на аппликаторе (ESwab) от транспортной системы Amies (Эймс) в полученную рану, вращательными движениями провести взятие клеточного материала вместе с отделяемым из раны, поместить тампон на аппликаторе в жидкую среду Amies (Эймс).
Контроль микрофлоры при установке металлоконструкции: тампоном на аппликаторе (ESwab) от транспортной среды Amies (Эймс) провести по поверхности кости в области установки металлоконструкции. Поместить тампон на аппликаторе с биоматериалом в жидкую среду Amies (Эймс).
Центральный венозный катетер: извлечь катетер из кровеносного сосуда. Край, находившийся в вене, стерильными ножницами состричь непосредственно в жидкую среду Amies (Эймс), размером не более 0.5 см.
Раневое отделяемое с кожи: при наличии гнойного отделяемого — предварительно убрать при помощи марлевой салфетки, смоченной стерильным физиологическим раствором (0.9%). При помощи тампона на аппликаторе (ESwab) провести взятие клеточного материала с кожи на границе здоровой и пораженной ткани. Поместить тампон на аппликаторе с биоматериалом в жидкую среду Amies (Эймс).
Биоптат кожи: биоптат, размером не более 0.3 см поместить в жидкую транспортную среду Amies (Эймс), в количестве 1 штуки. Опустить тампон на аппликаторе (ESwab) от транспортной системы Amies (Эймс) с полученную рану, вращательными движениями провести взятие клеточного материала, и поместить тампон на зонде в жидкую среду Amies (Эймс).
При взятии любого биоматериала: поместить тампон на аппликаторе (ESwab) в жидкую среду Amies (Эймс) даже если он не использовался. Отломить в красной линии надлома, закрыть оранжевой крышкой.

Хранение и транспортировка:

В жидкой среде Amies (Эймс) материал сохранен до 48 часов при температуре хранения +20С…+8 0С. Транспортировка осуществляется при температуре +20С…+80С (синий пакет).

Указывается наличие или отсутствие роста микрофлоры, дается количественная оценка выросших бактерий (КОЕ/там), проводится определение чувствительности к АМП при положительном результате.

Интерпретация результата:

В норме, отделяемое с поверхности внутренних органов, позвоночника, трубчатых костей, слизистая оболочка мочевого пузыря, должны быть стерильны.
При интерпретации результата бактериологического посева с кожного покрова, необходимо помнить о резидентной микрофлоре, которая будет обнаруживаться в большинстве случаев.

Бактериология раневого процесса. Бактериальный посев из раны

Посев отделяемого раны на флору – метод микробиологической диагностики раневой инфекции, заключающийся в выделении путем культивирования из раневого отделяемого предполагаемого возбудителя (при наличии - с последующим определением его чувствительности к противомикробным лекарственным средствам и препаратам бактериофагов).

Синонимы русские

Бактериологическое исследование раневого отделяемого, бакпосев отделяемого раны.

Синонимы английские

Bacterial Wound Culture, Aerobic Wound Culture with Sensitivity Testing, Drug Resistance Testing, Antimicrobial Susceptibility, Bacteriophage Susceptibility Testing.

Какой биоматериал можно использовать для исследования?

Как правильно подготовиться к исследованию?

Специальной подготовки не требуется.

Общая информация об исследовании

Одним из самых частых видов травматических повреждений являются раны. Загрязнение раневого дефекта в процессе ранения (контакт с землей, пылью, укусы животных и т. п.), наличие в ране закрытых полостей, инородных тел и омертвевших тканей способствуют развитию в ней раневой инфекции. Развитие инфекции в ране не только замедляет ее заживление, но и создает риск распространения инфекционного процесса в организме. Поэтому при появлении объективных признаков развития гнойно-воспалительного процесса в ране и прилегающих к ней тканях целесообразно проведение микробиологического исследования – посева отделяемого раны в целях верификации возбудителя и при его обнаружении определения его чувствительности к противомикробным препаратам для назначения эффективного лечения. К симптомам раневой инфекции можно отнести медленное заживление раны, покраснение, отечность, а также местное повышение температуры кожи вокруг раны, длительное отделение из раны по дренажу жидкости, отделение гноя, лихорадку.

Взятие материала для микробиологического исследования должно производиться медицинским работником. Доставленный в бактериологическую лабораторию материал используют для посева на специальные питательные среды – универсальные либо подобранные для определенной группы микроорганизмов, если есть подозрение на определенного возбудителя. Посевы инкубируют при температуре 37 градусов в течение суток и оценивают рост бактериальных колоний. При наличии роста выделенную культуру исследуют под микроскопом и с учетом предполагаемого вида микроорганизма пересеивают на другую среду для выделения чистой культуры. Полученную чистую культуру используют для верификации вида бактерии (с учетом исследования под микроскопом, окраски, использования специфических антител) и определения чувствительности к противомикробным лекарственным препаратам. При отсутствии роста колоний микроорганизмов в течение пяти суток емкости со средами выбрасываются и констатируется отрицательный результат посева.

Помимо антибиотиков, для лечения бактериальных инфекций можно применять бактериофаги – вирусы, избирательно поражающие только бактериальные клетки. Бактериофаги специфичны к определенному виду бактерии (например, стафилококковый бактериофаг не будет уничтожать другие бактерии, кроме стафилококков). Препараты бактериофагов производятся фармацевтической промышленностью. Но некоторые бактерии обладают устойчивостью к бактериофагам, кроме того, являясь биологическим препаратом, бактериофаг при нарушениях технологии производства и хранения может потерять свою эффективность. Поэтому перед назначением препарата бактериофага необходимо лабораторно подтвердить чувствительность к нему выделенного возбудителя.

Для чего используется исследование?

Для выявления и идентификации возбудителя раневой инфекции и при его наличии определения его чувствительности к антибиотикам и бактериофагам, в целях назначения эффективной терапии.

Когда назначается исследование?

При наличии симптомов, позволяющих заподозрить раневую инфекцию: медленном заживлении раны, покраснении, отечности, а также местной гипертермии кожи вокруг раны, длительном отделении из раны по дренажу жидкости, отделении гноя, лихорадке.

Что означают результаты?

Отрицательный результат - патогенная флора не выявлена - отсутствие роста микроорганизмов.

Положительный результат (указывается выявленная флора) - указывается вид выделенного микроорганизма. Следует отметить, что обитающие в норме в организме человека так называемые условно-патогенные микроорганизмы тоже могут быть выделены в процессе микробиологического исследования, обычно они не считаются возбудителями.

Чувствительность к антибиотикам определяется, если выявлена патогенная или условно-патогенная флора.

Чувствительность к бактериофагам. Обязательно указывается название бактериофага, производитель, серия, дата выпуска и срок годности препарата.

Также рекомендуется

Mycoplasma pneumoniae, ДНК [ПЦР]
Ureaplasma species, ДНК количественно [реал-тайм ПЦР]

Кто назначает исследование?

Пульмонолог, врач общей практики, педиатр, терапевт, врач-инфекционист, гинеколог, дерматовенеролог, уролог.

Литература

1) Mycoplasma Infections. Stephen G. Baum. Goldman-Cecil Medicine, 317, 2002-2007.e2.

Посев раневого отделяемого и тканей на микрофлору и определение чувствительности к антимикробным препаратам

Метод определения Исследование проводят методом посева на плотные питательные среды и среду обогащения ручным методом. Идентификацию микроорганизмов проводят методом масс-спектрометрии с помощью прибора Microflex Brucker Daltonik MALDI Biotyper, BRUKER, Германия. Определение чувствительности к антимикробным препаратам проводят диско-диффузионным методом с использованием анализатора ADAGIO, BIO-RAD, Франция.

Краткое описание исследования «Посев раневого отделяемого и тканей на микрофлору и определение чувствительности к антимикробным препаратам»

Микробиологическое исследование материала из ран направлено на выделение возбудителей с доказанной этиологической значимостью.

Инфекции кожи и мягких тканей (ИКМТ) являются обычно бактериальными и во многих случаях – полимикробными. Бактерии, которые чаще всего участвуют в процессе, – это Staphylococcus aureus, Streptococcus spp. (Streptococcus pyogenes и в меньшей степени – стрептококки групп В, С

Антибиотики относятся к лекарственным препаратам, эффективность которых является наиболее очевидной для лечения бактериальной инфекции. Основным ограничением эффективности антимикробных препаратов является способность микроорганизмов формировать устойчивость (резистентность) к их действию. Этот естественный процесс многократно ускоряется при необоснованном и избыточном применении антимикробных препаратов в качестве средств профилактики в медицине, средств самолечения широкими кругами населения.

Учитывая наличие указанных проблем, антимикробный препарат следует назначать только при наличии обоснованных показаний (подтвержденная или предполагаемая бактериальная инфекция) и с учетом результатов определения чувствительности к нему выделенного возбудителя.

Выделяемые микроорганизмы и возбудители:

Streptococcus pyogenes (бета-гемолитический стрептококк группы А, БГСА), реже  гемолитические стрептококки других групп (B, C, G);
Staphylococcus aureus;
Pasteurella multocida (при укусах);
Enterococcus spр.;
энтеробактерии;
неферментирующие грамотрицательные бактерии (Pseudomonas aeruginosa и др.);
дрожжевые грибы (Candida spp.).

ВАЖНО! Данное исследование не предусматривает обнаружение анаэробных микроорганизмов. Для полноценного обследования пациентов с укушенными ранами, угревой сыпью (глубокими угрями), паронихиями, некротизирующим фасциитом, пролежнями и газовой гангреной рекомендуется дополнительно назначать тест № 452 и бактериоскопию мазка на стекле (тест № 445).

Обращаем внимание на необходимость предварительного приобретения контейнера с транспортной средой, используемой при взятии мазков, в любом медицинском офисе ИНВИТРО.

С какой целью проводят Посев раневого отделяемого и тканей на микрофлору и определение чувствительности к антимикробным препаратам

Целью микробиологического исследования раневого отделяемого и тканей является подтверждение либо опровержение предположения о наличии инфекционного процесса в ране, а в случае его наличия – выявление ведущего патогена – определение его чувствительности к антимикробным препаратам для назначения или коррекции антибиотикотерапии.

Что может повлиять на результат теста «Посев раневого отделяемого и тканей на микрофлору и определение чувствительности к антимикробным препаратам»

Материал для исследования

Отделяемое из зубодесневого кармана
Содержимое абсцесса
Экссудат
Содержимое инфильтрата
Транссудат
Отделяемое раны
Гной
Мазок с языка
Мазок со слизистой щек, губ, десен
Отделяемое из хирургического дренажа

Важным моментом является способ получения клинического материала. Наиболее достоверные данные получают при исследовании биопсийного интраоперационного материала. Высокой степенью достоверности обладают результаты аспирационной биопсии. Соскоб или мазок из раны имеют в этом отношении наименьшую диагностическую ценность вследствие возможной посторонней контаминации.

Клинически наиболее значимые микроорганизмы будут выделяться из образцов, полученных в пределах жизнеспособных тканей (в области грануляционного вала).

В этих образцах, в гнойном отделяемом и на поверхностных участках ран обсемененность может быть различной.

Гной может не содержать жизнеспособных микроорганизмов в связи с аутолизом микробных клеток, что ведет к получению отрицательного результата посева.

При использовании микробиологического метода в качестве критерия оценки эффективности и достаточности антибактериальной терапии в динамике необходимо соблюдать одинаковую методику забора материала.

Правила подготовки к исследованию «Посев раневого отделяемого и тканей на микрофлору и определение чувствительности к антимикробным препаратам»

В каких случаях проводят Посев раневого отделяемого и тканей на микрофлору и определение чувствительности к антимикробным препаратам:

инфекции кожи и мягких тканей (фурункулы, карбункулы, абсцессы, флегмоны и т. д.), инфицированные раны, ожоги, остеомиелит и другие гнойной-воспалительные хирургические инфекции у пациентов молодого возраста без сопутствующих заболеваний, ранее не получавших антибиотикотерапию;
необходимость подбора антибиотиков для лечения.

Интерпретация результатов исследований содержит информацию для лечащего врача и не является диагнозом. Информацию из этого раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. Точный диагноз ставит врач, используя как результаты данного обследования, так и нужную информацию из других источников: анамнеза, результатов других обследований и т.д.

Трактовка результатов исследования «Посев раневого отделяемого и тканей на микрофлору и определение чувствительности к антимикробным препаратам»

Результат содержит информацию о наличии или отсутствии роста микроорганизмов, в т. ч. дрожжевых грибов, их количестве (кроме случаев, когда рост получен только со среды обогащения, когда точная количественная оценка невозможна), родовой и/или видовой принадлежности.

При выявлении роста этиологически значимых бактерий и условно-патогенных микроорганизмов в диагностическом титре проводят определение чувствительности к стандартному спектру антимикробных препаратов.

Определение вида грибов и постановка чувствительности к антимикотическим средствам в этот анализ не входит (при подозрении на грибковую инфекцию необходимо заказать тест № 442 ).

В случае роста в образцах сопутствующей микрофлоры (стрептококки группы viridans, Corynebacterium spр., коагулазонегативные стафилококки и др.) в низком титре на бланке результата исследования указывают род и вид микроорганизма, степень обсемененности и комментарий о принадлежности данных микроорганизмов к сопутствующей флоре; в этих случаях определение чувствительности к антимикробным препаратам не проводится. При полном отсутствии роста выдают результат «роста микрофлоры не выявлено». В случае роста микроорганизмов, для которых отсутствует стандартизованная методика определения чувствительности и критерии оценки, определение чувствительности невозможно, о чем дают соответствующие комментарии.

Дозаказ определения чувствительности к расширенному спектру АМП и бактериофагам не возможен, для этой цели назначают тесты № 474-Р, № 474-Ф.

Интерпретация

Учитывая высокую вероятность колонизации собственными микроорганизмами и микроорганизмами кожи и раневой поверхности в результате попадания бактерий из окружающей среды или эндогенно, следует признать, что выделение микроорганизмов из раны является ожидаемой закономерностью. Следовательно, само по себе обнаружение в ране микроорганизмов не может служить подтверждением наличия инфекции. Важнейшим критерием наличия инфекционного процесса в ране является клиническая картина. Выделение того или иного микроорганизма (или ассоциации микроорганизмов) на фоне отека, гиперемии области раны при остром процессе с большой вероятностью свидетельствует об инфекции. С другой стороны, слабовыраженные или отсутствующие признаки воспаления свидетельствуют в пользу контаминации. В случае хронических длительно существующих вторичных ран диагностические критерии инфекции более затруднительны вследствие вялотекущего воспалительного процесса.

В случае длительно существующей вторичной ИКМТ (инфекции диабетической стопы, хронические инфицированные трофические язвы и т. д.) нередким становится выделение ассоциации микробов, определение ведущей этиологической роли одного из которых становится подчас невыполнимой задачей. Показано, что определение чувствительности к антибиотикам необходимо только для двух, максимум трех наиболее вероятных патогенов, выделенных в ассоциации.

В патогенезе раневых инфекций основное значение имеют высоковирулентные микроорганизмы, вызывающие дополнительное повреждение тканей и существенно замедляющие репарацию ран. К таким микроорганизмам относят S. aureus, S. pyogenes, P. aeruginosa и энтеробактерии. При хронических ранах признаком инфекции и показанием для проведения антибактериальной терапии служит выделение S. aureus и P. aeruginosa.

При инфекциях кожи и мягких тканей достаточно часто выделяют Enterococcus spp., в основном Enterococcus faecalis, а также коагулазонегативные стафилококки. Указанные виды бактерий в большинстве случаев выделяют в составе различных ассоциаций и практически никогда – в виде монокультуры. В этой связи самостоятельная этиологическая роль этих микроорганизмов при инфекциях кожи и мягких тканей, а также костей и суставов подвергается сомнению.

Отсутствие роста бактерий не исключает наличия инфекций, вызванных микроорганизмами, которые не могут быть выделены в рамках данного исследования, в частности, анаэробами.

Посев на флору из раны

Посев на микрофлору из раны с определением чувствительности к расширенному спектру АБ

Бактериологический посев отделяемого ран на состав микрофлоры с определением чувствительности к антибиотикам проводят с целью диагностики бактериальных инфекций и обоснования наиболее адекватного лечения их антибактериальными препаратами.

Сроки выполнения	До 5 дней

Синонимы (rus)	Бактериологический посев отделяемого ран на состав микрофлоры с определением чувствительности к антибиотикам.

Cинонимы (eng)	Bacteriological seeding detachable wounds on the composition of the microflora with the definition of sensitivity to antibiotics.

Методы	Микробиологическое исследование, диско-диффузионный метод

Подготовка к исследованию	Получение материала раневого отделяемого выполняют до того, как начат курс терапии антибиотиками, либо спустя как минимум две недели после его завершения

Тип биоматериала и способы его забора	Раневое отделяемое, взятия пробы проводится с помощью ватного тампона с соблюдением стерильности.

Бакпосев флоры из раны

установления факта присутствия микроорганизмов в образцах, идентификация их видовой принадлежности, что представляет собой качественную составляющую результата анализа;
определение концентрации микроорганизмов по числу колоний, образующихся на чашках с питательной средой при их росте, что представляет количественную составляющую результата анализа;
проведение анализа на определение индивидуальной чувствительности представителей микрофлоры, демонстрирующих диагностический титр, к антибактериальным препаратам.

Микрофлора раневой инфекции

В микрофлоре отделяемого ран могут быть выявлены микроорганизмы, относящиеся к непатогенным, условно-патогенным, патогенным.

Анализ на чувствительность к расширенному списку антибиотиков проводят для условно-патогенных микробов, демонстрирующих высокие значения титра, для патогенных микробов. Для ран различного происхождения и локализации присуща преобладающая микрофлора.

представителей стафилококков;
представителей условно-патогенных грамотрицательных бактерий, кишечную палочку, энтеробактер, клебсиеллу, синегнойную палочку, протей;
представителей стрептококков, относящихся к группе А, а также анаэробных стрептококков.

Когда назначают бакпосев?

лицам с инфицированными и гнойными ранами;
лицам с ранами от ожогов, пролежней, с диабетической язвой стопы;
лицам с ранами в результате укусов;
лицам с целлюлитом;
лицам с остеомиелитом;
лицам с инфекционным поражением кожных покровов.

Результаты анализа

присутствия либо отсутствия роста условно-патогенных и патогенных микроорганизмах в отделяемом раны;
видовой принадлежности выявленных микроорганизмов с указанием их количества, чувствительности либо устойчивости к расширенному списку антибиотиков.

Россия, Краснодарский край,
г. Сочи, ул. Старонасыпная, 22.
Размещенная на сайте информация и прейскурант не являются публичной офертой.

1 ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Министерства здравоохранения РФ

Трофические язвы – самое распространенное осложнение хронической венозной недостаточности (ХВН), с которым человечество столкнулось на заре своего становления, оно остается актуальной проблемой современной медицины. Только в России свыше 35 млн человек страдают варикозной болезнью вен нижних конечностей, а 15% из них имеют трофические изменения кожных покровов нижних конечностей, 50% из которых осложняются образованием язв голеней. Изменения микрофлоры трофических язв венозной этиологии являются немаловажным фактором оценки эффективности различных методов консервативного лечения. Под наблюдением находились 107 больных обоего пола с трофическими язвами нижних конечностей, развившимися на фоне хронической венозной недостаточности. Для микробиологического исследования забирали отделяемое из раны на момент поступления до обработки трофической язвы растворами антисептиков и на 6-е сутки от начала лечения. Оценивали количественный и качественный состав микрофлоры. Посев исследуемого материала выполняли по методу Gould на питательные среды: кровяной агар (КА), желточно-солевой агар и среду Эндо, оценивали обсемененность поверхности трофической язвы микроорганизмами. Микробная обсемененность ран на 6-е сутки от начала лечения в 93,46% случаев составляла менее 105 микробных тел на 1 г ткани. И только в 6,54% микробная обсемененность ран была больше 105 микробных тел на 1 г ткани, но менее чем 106 микробных тел на 1 г ткани. На 6-е сутки лечения микробная обсемененность ран значительно снижается и не превышает 105 микробных тел на 1 г ткани, что дает возможность выполнять современные методики, позволяющие стимулировать процессы эпителизации и заживления трофических язв.

1. Чиглашвили Д.С., Молчанов Д.А. Комплексное лечение венозных трофических язв // Вестник новых медицинских технологий. 2009. Т. 16. № 2. С.116-117.

2. Горюнов С.В. / Под ред. Савельева В.С., Кириенко А.И. Трофические язвы. Клиническая хирургия: нац. рук. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008. Т.1. С. 619-654.

4. Нузова О.Б. Эффективность местного лечения трофических язв нижних конечностей // Казанский медицинский журнал. 2009. № 6. С. 817-821.

5. Карапетян Г.Э., Якимов С.В., Микитин И.Л., Кочетова Л.В., Пахомова Р.А. Лечение больных с трофическими язвами // Вестник хирургии им. И.И. Грекова. 2014. № 3. С. 817-821.

6. Popa R.F., Cazan I., Baroi G. Venous ulcer – a new therapeutic approach. Revista medico-chirurgicala a Societatii de Medici si Naturalisti din Iasi. 2016. Vol. 120. no 2. P. 306-310.

8. Аралова М.В. Лечение трофических язв нижних конечностей гидроактивными раневыми покрытиями // Вестник новых медицинских технологий. 2013. № 2. С. 25-28.

9. Дубровщик О.И., Довнар И.С., Колешко С.В., Ясюк Л.С., Ясюк А.А. Трофические язвы венозного генеза: современные возможности лечения // Журнал Гродненского государственного медицинского университета. 2016. № 2. С. 107-111.

10. Weller C.D., Barker A., DarbyI., Haines T., Underwood M., Ward S., Aldons P., Dapiran E., Madan J.J., Loveland P., Sinha S., Vicaretti M., Wolfe R., Woodward M., McNeil J. Aspirin in venous leg ulcer study (ASPiVLU): study protocol for a randomised controlled trial. Weller et al. Trials. 2016. Vol. 17. P. 192.

11. Sansilvestri-Morel P., Rupin A., Badier-Commander C. Chronic venous insufficiency: dysregulation of collagen synthesis. Angiology. 2003. Vol. 54. no 1. P. 13-18.

Различные рекомендации по лечению трофических язв нижних конечностей встречаются в древнеегипетских папирусах и свитках, датированных 2000–1500 гг. до н. э., однако поиск способов лечения трофических язв продолжается и в настоящее время. Предложено огромное количество методик местного лечения трофических язв [4–6].

Радикальная хирургическая обработка, включающая иссечение нежизнеспособных тканей длительно незаживающих ран венозной этиологии, до настоящего времени остается методикой выбора. К сожалению, хирургическая обработка практически не влияет на сроки заживления ран во вторую фазу раневого процесса, то есть фазу регенерации и эпителизации [7, 8].

В хирургию трофических язв молниеносно внедряются современные технологии их лечения. Большое признание получили современные методы, позволяющие максимально сохранить жизнеспособные ткани и ускорить заживление ран во вторую фазу раневого процесса, ускоряя процессы регенерации. В последнее время аутотрансплантация жировой ткани активно используется в области пластическо-реконструктивной хирургии и хирургической косметологии. В жировой ткани имеется большое количество мезенхимальных стволовых клеток, способных к дифференциации в зависимости от потребностей организма. Стволовые клетки ускоряют ранозаживление за счет сокращения второй фазы раневого процесса. Они высвобождают факторы роста, ускоряют клеточную пролиферацию и синтез коллагена, способствуют образованию новых сосудов. Неоваскуляризация является одним из механизмов образования грануляции. Безусловно, аутотрансплантация жировой ткани относится к одним из перспективных направлений лечения трофических инфицированных ран, развившихся на фоне нарушения кровообращения. Однако данные по влиянию степени обсемененности раны на эффективность аутотрансплантации жировой ткани в научной литературе разноречивы [9, 10].

Нет единого мнения относительно эффективности использования жировой ткани на инфицированных тканях, не имеющих тенденции к заживлению [11, 12]. В связи с этим актуальным представляется исследование количественного и качественного микробного пейзажа язв венозной этиологии на фоне стандартного лечения и определения возможных сроков использования методов, ускоряющих процессы регенерации и эпителизации в длительно незаживающих ранах.

Цель исследования: изучить микробиологический пейзаж длительно незаживающих трофических язв на фоне лечения.

Материалы и методы исследования

Под наблюдением находились 107 больных с ХВН, осложненной трофическими язвами нижних конечностей. Площадь трофических язв была меньше 20 см 2 . Таким образом, в исследование включены больные с малыми и средними по размерам трофическими язвами в возрасте от 28 до 87 лет, женщин было 54,2%.

Критерии исключения: больные с трофическими язвами, развившимися на фоне сахарного диабета первого и второго типа, осложненного синдромом диабетической стопы и атеросклероза сосудов нижних конечностей. Среди сопутствующих заболеваний гипертоническая болезнь и ишемическая болезнь сердца диагностированы у 23 больных, причем у 15 больных, находящихся на лечении, ишемическая болезнь сердца была в сочетании с гипертонической болезнью сердца. У больных, вошедших в исследование, дефицита массы тела не обнаружено. Масса тела не превышала нормальных показателей у 9 пациентов (8,4%), с предожирением было 43 (40,2%) больных, и ожирение разных степеней выявлено у 55 (51,4%) пациентов. Курящих в исследовании было 39 (36,5%) пациентов.

Все больные, находящиеся на лечении в хирургических отделениях клиники кафедры общей хирургии им. проф. М.И. Гульмана ФПО ГВПО КрасГМУ, получали общепринятое, стандартное лечение, которое включало: возвышенное положение пораженной нижней конечности, компрессионную терапию (лечебный компрессионный трикотаж 2-го класса компрессии), венотоники, антибиотики широкого спектра действия III поколения, противовоспалительные нестероидные средства, мочегонные, антикоагулянты. При необходимости и выраженном болевом синдроме больным назначались спазмолитики и физиотерапия. В качестве первого этапа лечения всем больным была выполнена первичная хирургическая обработка ран, включающая туалет раны и иссечение некротизированных и нежизнеспособных тканей. Кроме того, по методике, разработанной в клинике, всем больным рану обрабатывали пульсирующей струей озонированного физиологического раствора. Озонированный физиологический раствор готовили на установке УОТА-60-01 «Медозон» из расчета 40 мг/л. После хирургической обработки местное медикаментозное лечение ране определялось фазой раневого процесса. Поскольку все больные поступали с клиническими признаками инфицированной раны, использовали комбинированные повязки, обладающие антисептическими свойствами и свойствами ускорения регенерации. Ступенчатое применение разных препаратов в зависимости от фазы раневого процесса в клинике не осуществляли. Использовали мазь «Стелланин», дающую быстрый эффект.

Для микробиологического исследования забирали материал при поступлении больного в стационар до хирургической обработки и использования антисептиков, и на 6-е сутки стандартного лечения ХВН, осложненной трофическими язвами, определяли качественный и количественный состав микрофлоры.

Посев материала из длительно незаживающих инфицируемых ран у больных ХВН выполняли по методу Gould на питательные среды: желточно-солевой агар (ЖСА), среду Эндо и кровяной агар (КА). В качестве дифференциально-диагностических сред использовали среду Эндо и ЖСА, которые позволяли выявить стафилококковую и грамотрицательную обсемененность. Количественный̆ состав микрофлоры хронических язв определяли на кровяном агаре при отсутствии роста на среде Эндо и ЖСА.

Полученные данные статистически обработаны на персональном компьютере с помощью пакета прикладных программ IBM SPSS 20.0.

Для оценки статистической значимости различий учитывали отсутствие нормального распределения переменных в исследуемых группах, применяли непараметрический критерий Манна–Уитни.

Различия во всех случаях оценивали как статистически значимые при р

Результаты исследования и их обсуждение

При поступлении у всех больных выявлена высокая микробная обсемененность трофических язв. Только у 8 больных обсемененность была меньше 10 5 микробных тел на 1 г ткани. У 99 больных бактериальная обсемененность была выше 10 5 микробных тел на 1 г ткани, причем у 23 из них бактериальная обсемененность была выше 10 7 микробных тел на 1 г ткани (табл. 1).

Количество микроорганизмов в 1 г ткани больных ХВН, осложненной длительно незаживающими язвами, до начала лечения

Читайте также: